Brandberg-Roberts-Stolnikov yöntemi, idrardaki toplam proteinin belirlenmesine yönelik yarı niceliksel yöntemleri ifade eder. Yöntem, nitrik asit ve idrar sınırında protein varlığında pıhtılaşması ve beyaz bir halkanın ortaya çıkmasından oluşan Heller halka testine dayanmaktadır.

Reaktifler

%50 nitrik asit çözeltisi veya Larionova'nın reaktifi.
Larionova reaktifinin hazırlanması: doymuş bir sodyum klorür çözeltisi hazırlayın (20 - 30 g tuz, ısıtıldığında 100 ml su içinde çözülür, soğuyuncaya kadar bekletin). Süpernatan boşaltılır, süzülür. 99 ml süzüntüye 1 ml konsantre nitrik asit ekleyin. Nitrik asit yerine 2 ml konsantre hidroklorik asit ekleyebilirsiniz.

Kararlılığın ilerlemesi

Test tüpüne 1 - 2 ml nitrik asit (veya Larionik reaktif) dökülür, asidin test tüpünün duvarlarından akmasına izin verilir (5 - 8 dakika), aksi takdirde protein idrarı katmanlandığında bulanıklık oluşur test tüpünün duvarlarındaki nitrik asidin idrarla karışması nedeniyle belirgin bir halka oluşumunu engeller. Bu nedenle öncelikle asit içeren bir dizi test tüpü hazırlamalısınız. Bir pipet kullanarak aynı miktarda filtrelenmiş berrak idrarı test tüpünün duvarı boyunca dikkatli bir şekilde katmanlayın ve test tüpündeki sıvıyı karıştırmamaya dikkat edin. 2. ve 3. dakikalar arasında iki sıvının ara yüzeyinde ince beyaz bir halkanın görülmesi, yaklaşık 0,033 g/l konsantrasyonda proteinin varlığını gösterir. Katmanlama süresi çeyrek dakika olarak hesaplanır.

Halka, katmanlamadan 2 dakikadan daha önce ortaya çıkarsa, idrar suyla seyreltilmeli ve zaten seyreltilmiş idrarın tekrar katmanlanması yapılmalıdır. İdrar seyreltme derecesi, halkanın tipine, yani genişliğine, kompaktlığına ve ortaya çıkma zamanına bağlı olarak seçilir. 2 dakikadan önce ortaya çıkan filiform bir halka ile idrar 2 kez, geniş olanla - 4 kez, kompakt olanla - 8 kez vb. seyreltilir. İdrarın seyreltilmesi, bir ölçüm santrifüj tüpünde idrarın boşaltılmasıyla yapılır. 1 ml işaretlenir ve işarete kadar su ilave edilerek kaç defa seyreltme yapılır. Test tüpünün içeriği bir Pasteur pipeti ve bir balonla iyice karıştırılır. İdrarın seyreltilmesi sırasında bulanıklık ortaya çıkarsa, karışım tekrar filtrelenmeli ve nitrik asit üzerine sadece şeffaf süzüntü katılmalıdır. Protein konsantrasyonu daha sonra 0,033'ün seyreltme oranıyla çarpılmasıyla hesaplanır ve litre başına gram (g/l) cinsinden ifade edilir. Böyle bir idrar seyreltmesi, nitrik asit üzerine katmanlandığında halka 2. - 3. dakikada görünecek şekilde seçilir.

Seyreltilmemiş veya seyreltilmiş idrarda 1. ve 4. dakikalar arasında halka oluşması durumunda idrarın daha fazla sulanmaması için Ehrlich-Althausen düzeltmesi kullanılabilir (bu zaman kazandırır). Yazarlar filamentli halkanın ortaya çıkma zamanını belirlemeyi ve zaman hesaplamasını düzeltmeyi önerdiler. Bu durumda protein miktarı 0,033 g/l'nin seyreltme derecesi ve düzeltmeyle çarpılmasıyla hesaplanır.

1 dakika dolmadan bir halka oluştuğunda, bir fraksiyonel seyreltme, yani 1,5 kat (iki kısım idrar ve 1 kısım su) yapılmalıdır. Bu seyreltme idrardaki protein miktarı hesaplanırken de dikkate alınır.

Brandberg-Roberts-Stolnikov yöntemiyle idrardaki toplam proteinin belirlenmesine bir örnek.

İdrar reaktif üzerine katmanlandığında hemen geniş bir halka oluşur. İdrarı 4 kez seyreltin (1 kısım idrar + 3 kısım su), katman; Hemen iplik benzeri bir halka elde edilir. Mevcut seyreltmeyi 2 kat daha seyreltmek gerekir; Bu seyreltmeyi katmanlar halinde uygularken 1,5 dakika sonra bir halka oluşur. Daha fazla üremeye gerek yok.

Protein hesaplaması: idrar 4 ve 2 kez, dolayısıyla 8 kez seyreltildi. Protein miktarı 0,033*8*1 1/4 = 0,33 g/l

Brandberg-Roberts-Stolnikov yönteminin dezavantajları:

• öznellik,
• emek yoğunluğu,
• İdrar seyreltildiğinde protein konsantrasyonunun belirlenmesinin doğruluğunda azalma.

Ayrıca bakınız:

Edebiyat:

• El Kitabı "Klinikte laboratuvar araştırma yöntemleri" ed. prof. V.V. Menshikova. - Moskova, "Tıp", 1987
• L. V. Kozlovskaya, A. Yu.Nikolaev. Klinik laboratuvar araştırma yöntemleri üzerine bir ders kitabı. Moskova, Tıp, 1985
• A.Ya.Althauzen, “Klinik laboratuvar teşhisi” - Moskova, Medgiz, 1959
• A.Ya.Lyubina, L.P. Ilyicheva ve ortak yazarlar, “Klinik laboratuvar çalışmaları”, Moskova, “Tıp”, 1984

Pek çok hastalık belirgin klinik belirtiler olmadan ortaya çıkar, bu nedenle patolojik durumun zamanında tespiti ve tedavisi amacıyla idrardaki proteinin belirlenmesi pratik tıp için önemli bir noktadır.

İdrardaki protein kalitatif ve kantitatif yöntemlerle belirlenebilir.

Niteliksel yöntemler

Şu anda proteine ​​karşı bilinen yaklaşık 100 niteliksel reaksiyon vardır. Fiziksel veya kimyasal etki yoluyla protein çökelmesini içerirler. Olumlu bir reaksiyonla bulanıklık meydana gelir.

En bilgilendirici testler şunlardır:

1. Sülfosalisilik asit ile. En hassas olarak kabul edilir ve onun yardımıyla idrardaki en küçük protein cisimciklerini bile belirlemek mümkündür. Sonucun eser miktarda protein varlığı ile açıklaması "opaklık" terimiyle ve daha büyük miktarda - "zayıf pozitif", "pozitif" ve idrarda büyük miktarda protein kaybıyla - "güçlü pozitif reaksiyon" ile belirtilir. .
2. Bir asit ikamesi ile - aseptol. Maddenin bir çözeltisi idrara eklenir ve çözeltilerin sınırında bir halka oluştuğunda numunenin pozitif olduğu söylenir.
3. Geller. Nitrik asit çözeltisi kullanılarak üretilir. İşlemin sonucu Aseptol ile aynı şekilde yorumlanır. Bazen test sıvısında ürat mevcut olduğunda bir halka mevcut olabilir.
4. Potasyum kükürt dioksit ilavesiyle asetik asit ile. Böyle bir test yapılırken idrar konsantrasyonu yüksekse seyreltilir, aksi takdirde reaksiyon üratlar ve ürik asit olacağından yanlış pozitif sonuç ortaya çıkabilir.

Böyle bir testin yanlış yapılması, idrarları yüksek miktarda ürik asit içerdiğinden yenidoğanlarda sıklıkla yanlış sonuç verebilir.

Testleri yaparken temel kurallar şu şekildedir: Test edilen idrarın şeffaf olması, hafif asidik bir ortama sahip olması gerekir (bunun için bazen az miktarda asetik asit eklenir), iki test tüpü bulunmalıdır. izleme.

kantitatif

İdrar testi yapıldığında toplam protein de kantitatif yöntemler kullanılarak belirlenir. Bunlardan oldukça fazla var, ancak en sık kullanılanlar şunlardır:

1. Esbach yöntemi. 19. yüzyıldan beri kullanılmaktadır. Bunu yapmak için idrar ve reaktif belirli bir test tüpüne dökülür. Daha sonra karışım biraz çalkalanır ve üstü kapalı olarak 24-48 saat bekletilir. Ortaya çıkan çökelti test tüpünde bölünerek sayılır. Doğru sonuca ancak asidik idrarla ulaşılabilir. Bu teknik oldukça basittir ancak doğruluğu yüksek değildir ve zaman alıcıdır.
2. Brandberg-Stolnikov yöntemi. %3,3 mg'dan fazla protein konsantrasyonuna sahip bir sonuç elde etmenizi sağlayan Heller testine dayanmaktadır. Daha sonra bu yöntem değiştirildi ve basitleştirildi.
3. Protein miktarını belirlemek için nefelometrik yöntemler yaygın olarak kullanılmaktadır.

Protein miktarını tam olarak anlamak için günlük protein için idrar testi kullanmak en iyisidir.

Doğru sonuç için sabah ilk porsiyon dökülür, buzdolabında saklanması önerilen ikinci porsiyon tek kapta toplamaya başlanır.

Son kısım sabah toplanır. Bundan sonra hacmi ölçmeniz, ardından iyice karıştırmanız ve 50 ml'yi aşmayan bir kısmı bir kavanoza dökmeniz gerekir. Bu kap laboratuvara teslim edilmelidir. Özel bir form, günlük idrarın toplam hacminin yanı sıra hastanın boyunu ve kilosunu da belirtmenizi gerektirir.

Test şeritlerini kullanma

İdrardaki protein testi gösterge prensibine göre çalışır. Özel şeritler protein konsantrasyonuna bağlı olarak renk değiştirebilir. Farklı zamanlarda meydana gelen değişiklikleri belirlemek için uygundurlar ve hem evde hem de herhangi bir tıbbi ve koruyucu kurumda kullanılırlar.

Test idrar şeritleri, genitoüriner patolojilerin tedavisinin sonuçlarının erken belirlenmesi ve izlenmesi gerektiğinde kullanılır. Bu teşhis tekniği hassastır ve albümine 0,1 g/l'den itibaren konsantrasyonunda tepki verir ve idrardaki protein içeriğindeki niteliksel ve yarı niceliksel değişiklikleri belirlemenize olanak tanır.

Bu teşhisin sonuçlarına göre tedavinin etkinliğini izleyebilir, değişiklik yapabilir ve gerekli diyeti yazabilirsiniz.

İdrardaki proteinin belirlenmesi için işyerinin bileşimi aşağıdaki unsurları içerir:

1. Kimyasal test tüpleri, aglütinasyon test tüpleri.
2. Dereceli pipet seti.
3. Dar çekilmiş uçlu pipetler.
4. Alkol lambaları veya gaz yakıcı.
5. Siyah kağıt.
6. Buzlu asetik asit.
7. Sülfosalisilik asit.
8. Konsantre nitrik asit.
9. Arıtılmış su.

İdrarda protein belirleme yöntemleri

İdrarda proteinin kalitatif tespiti için kullanılan tüm yöntemler protein pıhtılaşmasına dayanmaktadır. Protein pıhtılaşması, değişen derecelerde bulanıklık (opaklıktan şiddetli bulanıklığa kadar) veya pul kaybıyla kendini gösterir.

İdrardaki proteinin kalitatif tespiti aşağıdaki yollardan biriyle gerçekleştirilebilir:

1. %10 asetik asit çözeltisi ile kaynatma;
2. %20'lik bir sülfosalisilik asit çözeltisi ile reaksiyon;
3. %50 nitrik asit çözeltisiyle reaksiyon (Geller testi);
4. doymuş bir sofra tuzu çözeltisi içinde% 1'lik bir nitrik asit çözeltisi ile reaksiyon (Larionova'ya göre değiştirilmiş Heller testi).

İdrarda proteinin niteliksel olarak belirlenmesinden önce aşağıdaki hazırlık çalışmaları yapılır:
1. Bulanık idrar kağıt filtreden süzülür. Berrak bir süzüntü elde etmek mümkün değilse, aynı filtreden tekrar süzün veya idrarı az miktarda infüzör toprağı veya talk ile karıştırdıktan sonra süzün.
2. İdrar alkali ise, turnusol veya evrensel gösterge kağıdının kontrolü altında% 10'luk asetik asit çözeltisi ile hafif asidik bir reaksiyona asitleştirilir.
3. Her birinde düşük tuz içeriği olan (düşük özgül ağırlığa sahip açık sarı veya soluk sarı idrar)
Tuz eksikliği protein pıhtılaşmasına neden olduğundan numuneye birkaç damla doymuş sofra tuzu çözeltisi ekleyin.
4. Bulanıklık derecesi siyah bir arka plan kullanılarak gözlemlenir. Fotoğrafta kullanılan siyah karton veya siyah kağıt arka plan olarak kullanılır. Siyah bir arka plan üzerindeki reaksiyonun muhasebeleştirilmesi, en ufak bulanıklık derecesini tanımlamanıza olanak tanır.

Numaralandırılmış test tüpleri ayrı bir rafa yerleştirilir. Aşağıdaki reaksiyonlardan birini üretirler.

1. %10 asetik asit çözeltisi ile kaynama testi. Bu test, aşağıdaki şekilde hazırlanan %10'luk bir asetik asit çözeltisi gerektirir: 10 ml buzlu asetik asit bir silindire yerleştirilir ve 100 ml işaretine kadar damıtılmış su ile tamamlanır.

Protein belirleme tekniği. Hafif asidik reaksiyona sahip 10-12 ml filtrelenmiş idrar, kimyasal bir test tüpüne yerleştirilir. Daha sonra test tüpünün idrarla birlikte üst kısmı hafifçe kaynatılarak ısıtılır ve buna 8-10 damla% 10'luk asetik asit çözeltisi eklenir. İdrar içeren bir test tüpü, iletilen ışıkta siyah bir arka planda görüntüleniyor. İdrarda protein varlığında, değişen derecelerde bulanıklık ortaya çıkar (opaklıktan büyük bulanıklığa kadar) veya pullar dökülür. Kontrol, test tüpünün ısıtmaya maruz kalmayan alt kısmıdır. Bu test %0,015'ten (% o - promil) başlayarak protein miktarını tespit eder.

2. %20 sülfosalisilik asit çözeltisi ile reaksiyon. %20'lik bir sülfosalisilik asit çözeltisi şu şekilde hazırlanır: 20 g sülfosalisilik asit, 70-80 ml damıtılmış su içinde çözülür, 100 ml'lik bir silindire aktarılır ve işarete kadar damıtılmış su ile tamamlanır. Hazırlanan reaktif koyu renkli cam bir kapta saklanır.

Protein belirleme tekniği. Aynı çaptaki iki tüpe, zayıf asit reaksiyonunun 2-3 ml filtrelenmiş idrarı yerleştirilir, tüplerden birine 3-4 damla% 20'lik sülfosalisilik asit çözeltisi eklenir, diğer tüp kontrol görevi görür. . Reaktif tüpünde protein mevcutsa bulanıklık veya pıhtılaşmış protein pulları görünecektir. Kontrol tüpünde sıvı berrak kalır. Sülfosalisilik asit, serum proteini ile birlikte, proteinin parçalanma ürünü olan albümozları (peptitler) çökeltir. Bulanık idrarın nedenini açıklığa kavuşturmak için idrar içeren bir test tüpü ısıtılır. Peynir altı suyu proteinlerinin oluşumunun neden olduğu bulanıklık artarken albümoz varlığının neden olduğu bulanıklık ortadan kalkar. Bu test öncekiyle aynı duyarlılığa sahiptir.

3. %50 nitrik asit çözeltisiyle reaksiyon (Geller testi). %50'lik bir nitrik asit çözeltisi şu şekilde hazırlanır: 50 ml damıtılmış su (1:1 seyreltme), özgül ağırlığı 1.2-1.4 olan 50 ml nitrik asite eklenir.

Protein belirleme tekniği. Dar küçük bir test tüpüne (aglütinasyon çamuru) 1 ml %50 nitrik asit dökülür. 1 ml filtrelenmiş test idrarı dar uçlu bir pipete alınır, reaktifin üzerine yayılır ve test tüpü dikey konuma aktarılır. Protein mevcut olduğunda sıvı arayüzünde beyaz bir halka belirir. Halkanın ortaya çıkma süresi ve özellikleri protein miktarına bağlıdır: Az miktarda protein varsa halka hemen görünmez, bu nedenle görünümü 2,5-3 dakika izlenir. Bu yöntemle belirlenen minimum protein miktarı 0,033°/oo'dur. İdrarda daha düşük protein içeriği ile halka oluşmaz. Reaksiyon sonuçları iletilen ışıkta siyah bir arka planda kaydedilir.

4. Doymuş bir sofra tuzu çözeltisinde% 1'lik bir nitrik asit çözeltisi ile reaksiyon - değiştirilmiş bir Heller testi (Larionova'ya göre). Testi gerçekleştirmek için doymuş sofra tuzu çözeltisinde (Larionova reaktifi) hazırlanmış %1'lik nitrik asit çözeltisi kullanın. 35 g sofra tuzu, 100 ml damıtılmış su içinde eritilir, çözelti süzülür, hazırlanan doymuş sofra tuzu çözeltisinin 99 ml'si, özgül ağırlığı 1.2-1.4 olan 1 ml konsantre nitrik asite ilave edilir.

Protein belirleme tekniği %50 nitrik asit çözeltisi ile reaksiyonda olduğu gibi (Geller testi), ancak 1 ml %50 nitrik asit çözeltisi yerine, bir test tüpüne 1 ml Larionova reaktifi dökülür ve üzerine 1 ml idrar katmanlar halinde yerleştirilir. BT. Sıvıların arayüzünde beyaz bir halkanın görülmesi, test edilen idrarda protein varlığını gösterir. Larionova testi Heller testi kadar duyarlıdır.

5. Proteinin kalitatif tespiti için kolorimetrik (kuru) test. İdrardaki proteinin kalitatif tespiti için kolorimetrik (kuru) test, proteinin tampon solüsyondaki indikatörün rengi üzerindeki etkisine dayanır.

Protein belirleme tekniği. Proteini belirlemek için tasarlanmış bir gösterge kağıdı parçası kısa bir süre idrara batırılır. Kağıdın mavi-yeşile dönmesi durumunda numune pozitif kabul edilir.

İdrarda protein miktarının belirlenmesi

İdrardaki proteinin kantitatif tespiti, protein içeren idrar %50 nitrik asit çözeltisi veya Larionova reaktifi ile kaplandığında, iki sıvının sınırında beyaz bir halkanın oluşması ve berrak beyaz bir halkanın ortaya çıkması durumunda beyaz bir halkanın oluşması gerçeğine dayanmaktadır. 3 dakika sonra protein içeriği %0,033 veya 1000 ml idrarda 33 mg olur. 3 dakikadan daha erken bir halkanın ortaya çıkması idrarda daha yüksek protein içeriğinin olduğunu gösterir.
İdrardaki protein miktarını belirlerken aşağıdaki kurallara uyulur:

1. Proteinin kantitatif tespiti yalnızca idrarın kalitatif olarak tespit edildiği kısımlarında gerçekleştirilir.
2. Belirleme dikkatlice filtrelenmiş idrarla yapılır.
3. Test idrarını, reaktif: idrar oranında (1:1) %50 nitrik asit çözeltisi veya Larionova reaktifiyle katmanlama tekniği kesinlikle takip edilir.
4. Halkanın ortaya çıkma süresi bir kronometre kullanılarak belirlenir: Protein miktarının son hesaplanmasında, idrarın nitrik asit üzerinde katmanlanma süresi 15 saniyedir.
5. İdrar halkanın özelliklerine göre seyreltilir. Bu durumda, sonraki her idrar seyreltmesi bir öncekinden hazırlanır.
6. Halkalar siyah bir arka plan üzerinde tanımlanır.

En yaygın olanı idrardaki proteinin kantitatif tayini için iki yöntemdir: Roberts-Stolnikov-Brandberg yöntemi ve S. L. Ehrlich ve A. Ya. Althauzen'in yöntemi.

1. Roberts-Stolnikov-Brandberg yöntemi. Bu yönteme göre idrardaki protein miktarı, idrar %50'lik nitrik asit çözeltisi veya Larion reaktifi ile bir sonraki katmanlandığında halka tam olarak 3 dakika içinde görünene kadar seyreltilerek belirlenir. Protein miktarı %0,033'ün idrar seyreltme derecesi ile çarpılmasıyla hesaplanır. Elde edilen sonuç, protein miktarını 1000 ml idrar başına miligram cinsinden, yani promil (%o) cinsinden ifade eder.
2. S. L. Erlich ve A. Ya. Althausen'in yöntemi. Bir dizi aglütinasyon tüpü, içine ilk önce 1 ml% 50 nitrik asit çözeltisi veya Larionova reaktifinin döküldüğü bir standa yerleştirilir. Test idrarı, dar, uzatılmış ucu olan ayrı, temiz, kuru bir pipetle alınır ve reaktifin üzerine katmanlar halinde yayılır, ardından kronometre açılır. Halkanın ortaya çıkma zamanı, test tüpünün siyah bir arka plan üzerine yerleştirilmesiyle izlenir. Zil göründüğünde kronometre kapatılır.

İdrarı katmanlandırırken protein miktarına bağlı olarak kompakt, geniş veya iplik benzeri bir halka görünebilir. İdrarın reaktif üzerine katmanlanmasından hemen sonra kompakt, geniş bir halka belirir. İplik benzeri halka hemen, bir dakika geçmeden veya bir ila dört dakika içinde görünebilir.

Bir ila 4 dakika içinde iplik benzeri bir halka belirirse idrarı sulandırmaya gerek yoktur!
Bu durumda protein miktarını hesaplamak için yazarların önerdiği tablo planını kullanmak yeterlidir (Tablo 1).

Örnek 1.İdrarı reaktif üzerine katmanlar halinde yerleştirirken, 2 dakika sonra filiform bir halka oluştu. Eğer 3 dakikada bir halka oluşmuş olsaydı protein miktarı %0,033 olacaktı.

Bu durumda halka daha erken oluşmuştur. Plan tablosuna göre 2 dakikalık bir süre için karşılık gelen düzeltme 1+1/8'e eşittir. Bu, idrarın belirli bir kısmındaki proteinin 0,033°/oo'dan 1+1/8 kat daha fazla olacağı anlamına gelir, yani %0,033 X(1+1/8) = 0,037°/oo.

1 dakika içinde, yani 40-60 saniye sonra iplik benzeri bir halka göründüğünde, idrarın 1,5 kat seyreltilmesini yapın (2 kısım idrar + 1 kısım su) ve ardından seyreltilmiş idrarı tekrar reaktif üzerine katmanlayın ve görünümü kaydedin. yüzüğün. Sonuçlar hesaplanırken idrarın 1,5 kat seyreltildiği dikkate alınır.

Örnek 2. 1,5 kat seyreltilmiş idrarın katmanlanmasının ardından 2 dakika içinde iplik benzeri bir halka ortaya çıktı. Halka 3 dakika içinde ortaya çıkarsa protein %0,033 olacaktır. Plan tablosuna göre 2 dakikalık süre için karşılık gelen değişiklik 1+1/8'dir. İdrardaki protein %0,033oX1,5X(1+1/8) = %0,056o içerir.

Hemen iplik benzeri bir halka belirirse idrar 2 kez seyreltilir (1 kısım idrar + 1 kısım su). Seyreltilmiş idrar tekrar reaktif üzerine katmanlanır ve 1 dakika sonra bir halkanın görünümü not edilir.

Örnek 3. 2 kat seyreltilmiş idrarı reaktif üzerine katmanlar halinde yerleştirirken, 1 dakika 15 saniye sonra iplik benzeri bir halka ortaya çıktı. Daha sonra, önceki hesaplamalara benzer şekilde test edilen idrardaki protein miktarı şuna eşit olacaktır:
%0,033оХ2Х(1+3/8) = %0,091.
Geniş bir halka belirirse idrar 4 kez seyreltilir (1 kısım idrar + 3 kısım su).
Seyreltilmiş idrarın daha sonra katmanlanmasıyla, bir dakikadan önce veya sonra iplik benzeri bir halka oluşabilir. Bu gibi durumlarda, protein miktarı önceki örneklere benzetilerek hesaplanır, yani %0,033 o, seyreltme derecesi ve karşılık gelen düzeltme ile çarpılır.

Örnek 1.İdrarı 4 kez seyrelttikten sonra halka hemen ortaya çıktı. İdrar 2 kez seyreltilir. 8 kat (4X2) seyreltilmiş idrarın katmanlara ayrılmasından sonra 1,5 dakika içinde iplik benzeri bir halka oluştu. Bu durumda protein miktarı %0,033oX8X1,25 = %0,33o vb. olur.
Kompakt bir halka göründüğünde idrar 8 kez seyreltilir (1 kısım idrar + 7 kısım su). Seyreltilmiş idrar daha sonra reaktif üzerine katmanlandığında kompakt, geniş veya iplik benzeri bir halka oluşabilir.

Örnek 2.İdrar nitrik asit üzerinde katmanlandığında hemen kompakt bir halka oluştu. İdrar 8 kez seyreltilir (1 kısım idrar + 7 kısım su) ve tekrar katmanlanır. Bu yine kompakt bir halka üretti. Daha sonra idrar 8 kez daha seyreltilir (bunu yapmak için seyreltilmiş idrarın 1 kısmını bir silindire veya test tüpüne alın ve üzerine 7 kısım su ekleyin). Seyreltilmiş idrarın bir kez daha katmanlanmasının ardından hemen iplik benzeri bir halka oluştu. İdrar 2 kez seyreltilir (1 kısım idrar + 1 kısım su). Seyreltilmiş idrarın bir kez daha katmanlanmasından sonra, 2 dakika içinde iplik benzeri bir halka oluştu. İdrarın belirli bir kısmındaki protein miktarı şu şekilde hesaplanır: %0,033.oX8X8X2X(1+1/8) = %4,8o.

Plan tablosuna ek olarak hesaplanan protein rakamlarının yer aldığı bir tablo bulunmaktadır (Tablo 2). İdrar seyreltilmemişse, protein miktarı “Tam, seyreltilmemiş idrar” sütununda bulunur. İdrarı tam sayı (8,4,2) kadar seyreltirken tabloyu kullanın. 1. İdrarı 1,5 kat seyreltirken tabloyu kullanın. 2.

İdrardaki protein içeriğini belirlemek için tablo kullanma tekniği

Tablonun ilgili sütunlarında halkanın ortaya çıkma zamanını ve idrar seyreltme derecesini belirtin.
Bu iki göstergeden çizilen yatay ve dikey çizgilerin kesiştiği noktada bulunan sayı, test idrarındaki protein miktarını (% o) gösterir.

Protein için pozitif niteliksel bir testle, %50 nitrik asit çözeltisi üzerine katmanlandığında halkanın oluşmaması mümkündür. Bu, idrarda %0,033'ten az protein olduğu anlamına gelir. Bu gibi durumlarda analiz formundaki protein miktarına "iz" adı verilir.

Protein miktarı belirlenirse, ppromille'deki protein içeriği idrar tahlili formunda belirtilir, örneğin "protein - %0,66 o".

İdrarın ayrı bir kısmındaki proteinin kantitatif tespitine ek olarak günlük miktarı gram cinsinden hesaplanır. Bu amaçla günlük idrar toplanır, miktarı ölçülür ve promildeki protein içeriği belirlenir. Daha sonra hesaplama yapılır. Örneğin günlük idrar miktarı 1800 ml, protein ise 7°/oo'dur. Bu, günlük idrar miktarının protein içerdiği anlamına gelir: 1,8X7 = 12,6 g.

Hedef– idrarda proteinin belirlenmesi.

Belirteçler- Hamilelik sırasındaki hipertansif durumlar, hamile kadınlarda böbrek hastalığı

Kontrendikasyonlar- HAYIR.

Olası komplikasyonlar- HAYIR

Kaynaklar– kap, steril kavanoz, test tüpleri, %30 sülfosalisilik veya %3 asetik asit, pipet, alkol yakıcı.

Eylem algoritması:

1. Hamile kadına idrardaki proteinin belirlenmesi gerektiğini açıklayın.

2. Hamile kadından idrarını steril bir kavanozda toplamasını isteyin.

3. Sülfosalisilik asit ile test edin: Bir test tüpüne 4-5 ml idrar dökün, 6-10 damla asit ekleyin. İdrarda protein varsa çökelti veya bulanıklık oluşur.

4. %3 asetik asit numunesi: Bir test tüpüne 8-10 ml idrar dökün, alkol yakıcıda kaynatın, idrar protein içeriyorsa bulanıklaşacaktır. Bulanık idrara birkaç damla %3 asetik asit çözeltisi ekleyin. İdrarda bulanıklık kaybolursa test negatiftir.

NOTLAR Kadın doğum kurumunun kabul bölümünde belirlenir.

Standart "Beklenen doğum tarihinin tarihinin belirlenmesi."

Hedef: beklenen teslim tarihinin belirlenmesinde mezunun pratik becerilerini değerlendirmek

Belirteçler- Hamile bir kadın için doğumhaneye yapılan her ziyaret.

Kontrendikasyonlar- HAYIR

Olası komplikasyonlar- HAYIR

Kaynaklar– bir masa, iki sandalye, bir takvim, bir doğum takvimi, son adet görmenin ilk gününe ilişkin yazılı bilgi, doğum öncesi kliniğine ilk başvuru, sonuçlu ultrason tarihi, doğum öncesi izin tarihi

Eylem algoritması:

1. Kendinizi tanıtın ve kadına beklenen doğum tarihini hesaplamanın önemini açıklayın.
2. Hamile kadının son adet tarihinin ilk gününü öğrenin, bu tarihe 280 gün ekleyin veya Negele formülünü kullanarak son adet tarihinin 1 gününe 7 gün ekleyin ve 3 ay çıkarın, ortaya çıkan tarih doğum tarihidir adet için.
3. İlk fetal hareketin tarihini bulun, bu güne primiparlar için 140 gün, multiparlar için 154 gün ekleyin, ortaya çıkan tarih fetal hareketin son tarihidir.
4. Adet döngüsüne göre son yumurtlamanın hangi gün gerçekleştiğini belirleyin ve son adetin ilk gününden itibaren üç ay geriye doğru sayın ve yumurtlamadan önceki gün sayısını ekleyin, doğum tarihini öğrenin.
5. Doğum tarihinizi doğum öncesi kliniğine ilk ziyaretinize göre hesaplayın. Hamileliğin ilk 12 haftasında hamile kadının doktora başvurması halinde hata minimum düzeyde olacaktır.
6. Doğum öncesi izin tarihine göre son tarihi belirleyin. Doğum öncesi izin süresi gebeliğin 30. haftasında başlar. Bu tarihe 10 hafta ekleyin ve son tarihi alın.
7. Doğum öncesi kliniğinde gerçekleştirilen ultrason taramasını kullanarak doğum tarihini hesaplayın.

Standart "Dış cinsel organın muayenesi"

Hedef: Hamile bir kadının dış cinsel organını incelerken mezunun pratik becerilerini değerlendirmek

Belirteçler- Hamile kadının doğum kurumuna ilk başvuru, düzenli doğum faaliyeti ile hastaneye kabul.

Kontrendikasyonlar- HAYIR

Olası komplikasyonlar- HAYIR

Kaynaklar– kadın hayaleti, kanepe, kanepe için tek kullanımlık iç çamaşırı

Eylem algoritması:

1. Kendinizi tanıtın, kadına dış cinsel organ muayenesinin önemini, uygulama aşamalarını açıklayın, rızasını alın

2. Hijyenik el dezenfeksiyonu yapın

3. Her iki elinize de steril eldivenler takın.

4. Dış genital organları inceleyin: saç büyümesinin türünü, büyük ve küçük dudakların yapısını, klitorisi, perine durumunu değerlendirin.

5. Her iki elin başparmağı ve işaret parmağıyla labia majorayı açın, üretranın dış açıklığının durumunu, vajinanın girişini inceleyin, Bartholin bezlerinin bölgesini (labia majoranın alt üçte biri) palpe edin.

6. Tek kullanımlık eldivenleri çıkarın ve güvenli imha kutusuna koyun.

7. Ellerinizi sabunla yıkayın.

8. Hamile kadına dış cinsel organın durumu hakkında bilgi verin.

9. Dokümantasyona not alın.

NOT Muayene, kadının onurunu aşağılamadan, gizlilik içinde yapılıyor.

Standart "Eklampsi için acil bakımın sağlanması"

Hedef: Mezunların eklampsiye acil bakım sağlama konusundaki pratik becerilerini değerlendirmek

Belirteçler- Eklampside nöbetler

Kontrendikasyonlar- HAYIR

Olası komplikasyonlar- tekrarlanan nöbetler, eklamptik koma.

Kaynaklar– kadın mankeni, %25 magnezyum sülfat solüsyonu, spatula, dil tutucu, 20 ml şırınga, 500 ml salin solüsyonu, intravenöz infüzyon sistemi, alkol, pamuk yünü, turnike

Eylem algoritması:

1. Nöbet geçirmeniz durumunda hastayı yanından ayırmadan mevcut tüm personeli ve resüsitasyon ekibini arayın.

2. Aşağıdaki faaliyetleri aynı anda gerçekleştirin:

· Gazlı beze sarılı bir spatula veya kaşıkla ağzınızı açarak hava yollarını temizleyin ve dil tutucuyla dilinizi uzatın.

· Tükürüğü ağzınızdan çıkarın; nefes alır almaz, havanın serbest erişimini sağlayın.

· Nöbetleri durdurduktan sonra, 10-15 dakika boyunca intravenöz olarak %25-20 ml başlangıç ​​dozunda magnezyum sülfat uygulayın.

3. 80 ml - %25 magnezyum sülfat çözeltisi ile 320 ml salinin intravenöz infüzyonunu başlatın.

4. Tansiyon kontrolü altında ve devam eden magnezyum tedavisi altında hastayı sedyeye alın ve en yakın doğumevinin yoğun bakım ünitesine nakledin.

NOT

Eklampsi durumunda doğum, hastanın durumu stabil hale geldikten sonra, ancak nöbetlerin başlamasından en geç 12 saat sonra gerçekleşmelidir.

Standart “Şiddetli preeklampsi için acil bakımın sağlanması.”

Hedef: Mezunların şiddetli preeklampsiye acil bakım sağlama konusundaki pratik becerilerini değerlendirmek

Belirteçler– şiddetli preeklampsi

Kontrendikasyonlar- konvülsiyon krizi sırasında

Olası komplikasyonlar– konvülsiyon atağı, eklamptik koma.

Kaynaklar– kadın mankeni, %25 magnezyum sülfat solüsyonu, 20 ml şırınga, 500 ml salin solüsyonu, intravenöz infüzyon sistemi, alkol, pamuk yünü, turnike

Eylem algoritması:

1. Teşhis koyun: Bu semptomlardan biri mevcutsa “Şiddetli preeklampsi”: baş ağrısı, epigastrik bölgede ağrı, bulanık görme, gözlerin önünde yanıp sönen noktalar, bulantı, kusma, arteriyel hipertansiyonun arka planında (140/90 mm) Hg ve üstü) ve proteinüri.

2. Hastanın yanından ayrılmadan tüm ücretsiz personeli ve resüsitasyon ekibini arayın.

3. Aşağıdaki faaliyetleri aynı anda gerçekleştirin:

Hamile kadını zarar görmeyecek şekilde düz bir yüzeye yatırın ve hastanın kafasını bir tarafa çevirin.

Magnezyum sülfatın başlangıç ​​dozunu intravenöz olarak girin - 10-15 dakika boyunca% 25 -20 ml.

4. 80 ml %25 magnezyum sülfat çözeltisi ile 320 ml normal salinin intravenöz infüzyonunu başlatın.

5. Kan basıncı 160/100 mmHg'ye eşit veya daha yüksek olduğunda. dil altına 10 mg nifedipin reçete ederek kan basıncını düzenleyin, yine 30 dakika sonra kan basıncının kontrolü altında 10 mg (kan basıncını 130/90-140/95 mm Hg'de koruyun).

6. Tansiyon kontrolü ve devam eden magnezyum tedavisi altında hastayı sedyeye alın ve en yakın doğum hastanesinin yoğun bakım ünitesine nakledin.

NOT Magnezyum sülfat doz aşımı belirtileri ortaya çıkarsa, 10 dakika boyunca intravenöz olarak 10 ml %10 Ca glukonat çözeltisi uygulayın.

Amniyotomi standardı.

Hedef- amniyotik kesenin açılması.

Belirteçler– doğum indüksiyonu öncesi, doğumun uyarılması, doğumun zayıflığı Kontrendikasyonlar– anne veya fetüsün tehdit edici koşulları

Olası komplikasyonlar– fetüsün küçük parçalarının kaybı, artan enfeksiyon, amniyotik kesenin damarlarında yaralanma, normal yerleşimli plasentanın ayrılması

Kaynaklar– jinekolojik sandalye, bireysel bebek bezi, steril eldivenler, kadının dış cinsel organını tedavi etmek için antiseptik, kurşun forseps dalı.

Eylem algoritması:

1. Kendinizi tanıtın.

2. Kadına bu operasyonun gerekliliğini açıklayın.

3. İşlem için hastanın bilgilendirilmiş onamını alın

4. Kadını jinekolojik sandalyeye tek kullanımlık bir bez koyarak yerleştirin.

5. Kadının dış cinsel organını antiseptik bir solüsyonla tedavi edin ve kadının karnına steril bir bez yerleştirin.

6. Hijyenik el dezenfeksiyonu yapın.

7. Her iki elinize de tek kullanımlık eldivenler takın.

8. Sol elinizin parmaklarını kullanarak iç dudakları açın ve sırayla vajinaya yerleştirin.

işaret parmağı, sonra sağ elin orta parmağı.

9. Mermi forsepsinin çenesini indeks ve orta arasındaki vajinaya yerleştirin.

parmaklar.

10. Amniyotik keseyi delin.

11. Amniyotik kesede oluşan deliğe önce işaret parmağınızı, ardından orta parmağınızı sokun, deliği yavaş yavaş genişletin ve kafadaki zarları çıkarın. Amniyotik sıvıyı parmaklarınızın kontrolü altında yavaşça boşaltın (küçük parçaların kaybının önlenmesi, normal yerleşimli plasentanın ayrılmasının önlenmesi).

13. Parmaklarınızı dışarı çekin.

14. Eldivenleri çıkarın ve güvenli imha kutusuna koyun.

15. Ellerinizi sabunla yıkayın.

16. Doğum geçmişindeki verileri yazın.

NOT.

Polihidramniyos için küçük bir delik açın ve suyu yavaşça boşaltın. Suyun çıkış hızını kontrol etmek gerekir, çünkü hızlı ve aniden serbest bırakılırsa fetüsün küçük parçaları düşebilir. Su geldikten sonra kadının 30 dakika uzanması tavsiye edilir.

Ekspres yöntemi kullanarak idrardaki proteini belirlemek için algoritma.

Hedef: Geç gestozun erken tanısı.

Teçhizat: kap, steril kavanoz, test tüplerinin bulunduğu stand, %30 sülfosalisilik veya asetik asit içeren şişe, pipet, alkol yakıcı.

1. Hamile kadına bu çalışmanın gerekliliğini açıklayın.

2. Hamile kadından idrarını steril bir kavanozda toplamasını isteyin.

3. Test tüpüne 4-5 ml dökün. incelenen idrar.

4. Sülfosalisilik asitle test edin:

İdrarla birlikte test tüpüne 6-10 damla %30 sülfosalisilik asit ekleyin. İdrarda protein varsa çökelti veya bulanıklık oluşur.

5. Asetik asitle test edin:

Bir test tüpüne 6-10 ml idrar dökülür ve alkol yakıcıda kaynatılır - protein içeren idrar bulanıklaşır. Bulanık idrara birkaç damla %3-5 asetik asit çözeltisi ekleyin. Bulanıklık kaybolmuşsa test negatiftir.

Doğum için uterusun biyolojik aktivitesini belirleyen algoritma. "Oksitosin testi".

Hedef: Vücudun doğuma hazır olup olmadığının belirlenmesi.

Teçhizat:%0,9 - 500,0 salin solüsyonu, 5 ünite oksitosin, 10,0 şırınga, %70 alkol, pamuk yünü, ikinci el ile saat.

1. Hamile kadına bu çalışmanın gerekliliğini açıklayın.

2. Hamile kadından sırtüstü yatarken 15 dakika boyunca duygusal ve fiziksel olarak tam bir dinlenme sağlamasını isteyin. Bu, çeşitli faktörlerin etkisiyle uterusun olası kasılmalarını önlemek için gereklidir.

3. 10 gramlık bir şırıngayı 10 ml ile doldurun. 1 ml başına 0.01 IU oksitosin oranında hazırlanan çözelti. izotonik sodyum klorür çözeltisi. Çözüm şu şekilde hazırlanır:

5 birim (1 ml) oksitosin, 500 ml'de seyreltilir. izotonik sodyum klorür çözeltisi (5 ID: 500,0 = 0,01 BİRİM: 1 ml). Şişeden, test için elde edilen çözeltinin 10.0'ını çekmek için 10 gramlık bir şırınga kullanın.

4. Damar delme işlemini gerçekleştirin ve bunun uterus kasılmalarına neden olmadığından emin olarak intravenöz oksitosin çözeltisi uygulamasına başlayın.

5. Solüsyonu uygulamaya başlama zamanını belirleyin.

6. "Sarsıntılı", 1 ml. 1 dakikalık aralıklarla çözeltiyi enjekte edin, ancak 5 ml'yi geçmeyin. Rahim kasılmaları meydana geldiğinde çözeltinin uygulanmasını durdurun.

7. Enjeksiyonların başlamasından sonraki ilk 3 dakika içinde rahim kasılmaları kaydedilirse ve sonraki 24-48 saat içinde doğum gerçekleşirse test pozitif kabul edilir. Yerleştirmeden 4 dakika sonra ortaya çıkan rahim kasılmaları negatif bir test olarak kabul edilir; doğum 3 ila 8 gün içinde gerçekleşir.

8. Sonucu birincil belgelere kaydedin.

5.4. Rahim ağzının “olgunluğunu” değerlendirmek için algoritma.

Hedef: rahim ağzının doğum için hazır olup olmadığının belirlenmesi.

Teçhizat: dezenfektan, paçavra, steril eldiven, masa.

1. Hamile kadına bu işlemin gerekliliğini açıklayın.

2. Sandalyeyi %0,5 kalsiyum hipoklorit solüsyonuna batırılmış bir bezle silin

3. Sandalyenin üzerine temiz bir bebek bezi koyun.

4. Hamile kadını jinekolojik sandalyeye yerleştirin.

5. Dış cinsel organı dezenfektan solüsyonlarından biriyle tedavi edin.

6. Steril eldiven giyin.

7. Sol elinizle birinci ve ikinci parmaklarınızla iç dudakları açın ve sağ elinizin 2-3. parmağını vajinaya sokun.